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Funakoshi精品推荐——LipiDye Ⅱ 脂滴活细胞成像试剂

发布日期:2024-10-17
编辑:市场部
浏览次数:126

Funakoshi LipiDye II是一款适用于长时间活细胞成像以观察动态脂滴(LDS)合成、移动或降解的绿色荧光染料;是LipiDye(货号:FDV-0010)的升级版,同时具备超强的光稳定性和高灵敏度等特点。


 产品信息

货号

FVD-0027

规格

0.1mg

化学式

C26H17NO2S2

分子大小

439.5 g/mol

溶解性

溶于DMSO

荧光特性

Ex. 400-500   nm(maximum ~420 nm)

与蓝色激发激光器(如405、445、458、473和488 nm*激光器等)、氙灯或带有商用FITC或GFP滤光片的LED兼容;

注:488 nm可激发LipiDye II,但与473 nm激发相比荧光较弱。

如果使用488 nm激光,请根据实验经验优化成像条件,如染料浓度等。

Em. 450-650   nm(取决于溶剂)

如豆油的最大值~510nm,与LD相似。建议在490-550 nm范围内使用。

➧ 产品特点

✍ 可检测非脂肪细胞中直径 < 1μm的微小脂滴。

✍  适用于长时间活细胞成像,具有超强的光稳定性。

✍  适用脂滴分解与合成。

✍  适用于脂肪细胞分化过程,时间可长达8天。

✍  适用于活细胞、固定处理的细胞以及活细胞染色后再固定细胞染色。

✍  推荐使用浓度为0.1~1 μM,对细胞几乎无毒性。

✍  可对细胞脂滴进行半定量分析。

 

● 脂滴与LipiDye II

脂滴(Lipid droplets,LDs)是一种具有独特的单层磷脂,可储存甘油三酯和甾醇酯等中性脂质的细胞器(图1)。LDs普遍存在于脂肪细胞中,具有储存能量和脂质运输的功能。研究发现,LDs不仅存在于脂肪细胞,还存在肝细胞和神经胶质细胞等其他非脂肪细胞中,明确LDs具有调节代谢以及保护邻近细胞免受脂质毒性的功能。LDs的数量大小以及组成因细胞类型的不同而不同。例如,脂肪细胞中LDs的直径 > 10μm,可通过光学显微镜观察到;而非脂肪细胞中LDs的直径在0.1μm~1μm(图2)。因此,实现可以检测出活细胞中非脂肪细胞的微小LDs的动态运动及功能将是一个重要突破。

 

传统的LDs荧光染料(如尼罗河红)仅限于检测脂肪细胞或经过量脂质处理的细胞中相对较大的LDs;在活细胞条件下无法实现检测存在于非脂肪细胞的微小LDs。Funakoshi的LipiDye(货号:FDV-0010)可检测1μm大小的LDs,虽然其具备高灵敏度和高选择性,但LipiDye需要405 nm的激发波长,光稳定性不足,不适合用于长期活细胞成像以观察动态LDs的合成、移动或降解。

 

因此,Funakoshi又推出了LipiDye的升级版—LipiDye II,可被毒性较低的450-480 nm激发,并具有超强的光稳定性;同时适用于长时间活细胞成像,包括短期多时间激发的Z-stack延时成像。

脂滴的结构与组成

图1 脂滴的结构与组成


脂滴在脂肪细胞和非脂肪细胞的直径大小.png

图2 脂滴在脂肪细胞和非脂肪细胞的直径大小

 

● 活细胞成像的一般步骤(仅供参考,请以产品说明书的为准)

1、在无血清、无酚红的培养基中配制1 μM的LipiDye II;

(注:LipiDye II可与含FBS的培养基兼容,但需优化FBS和LipiDye II的浓度;推荐浓度0.1 μM用~405 nm激发,浓度1μM用~473 nm激发;根据实验经验优化并确定LipiDye II的浓度)

2、去除培养基,用PBS冲洗细胞数次;

3、向细胞中加入含LipiDye II的培养基;

4、37℃孵育30分钟以上(注:根据实验经验优化孵育时间);

5、使用PBS或培养基清洗细胞并加入新鲜培养基(可选);

6、观察细胞。

活细胞成像的一般步骤


➧ 参考数据

● LipiDye II的光谱

LipiDye II的光谱 

图A:LipiDye II的吸收光谱几乎不受溶剂影响,可观察LipiDye II在400 nm~500 nm的吸收。

图B:LipiDye II在不同溶剂中有不同的发射光谱。如在甲苯和二氯甲烷等低极性溶剂中,它发出的荧光从蓝色到绿色,量子产率高;另一方面,在高极性溶剂(乙腈、二甲基亚砜和水)中,LipiDye II则表现出弱荧光强度和红移荧光。

图C:用LipiDye II对细胞染色,在荧光显微镜下约500 nm处观察细胞中LDs的发射光谱。


● LipiDye II的光稳定性

分别使用 LipiDye II(红)、旧版LipiDye(蓝)和传统LD dye B(灰)对提前固定在4% 甲醛中的3T3-L1脂肪细胞进行染色;然后用共聚焦显微镜(Ex. 473 nm/Em 490-540 nm)反复采集同一区域脂肪细胞的Z-stack成像,观察荧光强度的变化。传统染料B的荧光强度在5次Z-stack成像后,荧光强度显著降低;旧版LipiDye在经过50次Z-stack成像后,其荧光强度则逐渐降低约60%。而LipiDye II 即使经过50次(共500次光照射),其荧光强度几乎没有任何变化。证明LipiDye II非常适用于长时间的延时成像,具有超强的光稳定性。

超强的光稳定性.png 


● LipiDye II的细胞毒性

使用不同浓度的LipiDye II培养3T3-L1脂肪细胞24小时。随后用MTT法评估细胞活力。结果显示LipiDye II < 5μM对脂肪细胞没有细胞毒性,在10 μM以上才观察到细胞毒性。本试剂推荐使用浓度为0.1~1 μM。

LipiDye II的细胞毒性.png

 

● 活细胞和PFA固定细胞染色

使用LipiDye II染色在活细胞状态下的3T3-L1脂肪细胞,进行活细胞成像。然后用4% PFA固定3T3-L1脂肪细胞,再次进行荧光观察(Ex. nm/Em 490-540 nm)。细胞在固定前后的荧光强度几乎没有任何变化,证明LipiDye II可用于活细胞染色,也可用于活细胞成像后的任何免疫细胞化学实验。

荧光强度的对比.png

LipiDye®染色的活细胞和经PFA固定后的荧光强度的对比

 

➧ 应用数据

● LipiDye II在不同细胞中的染色

使用LipiDye II(1μM)分别对3T3-L1、HepG2、COS-7和HeLa细胞染色12小时,随后在荧光显微镜下观察(Ex. 473 nm/Em 490-540 nm;比例尺:20μm)。在HepG2细胞染色前一天,使用棕榈酸(0.33 mM)/油酸(0.66 mM)处理诱导脂滴形成;HeLa细胞中,可清晰观察到约1 μm的微小LDs(比例尺:5μm)。

LipiDye II在不同细胞中的染色.png

 

● 内质网(ER)标记的多色成像

用LipiDye II(1 μM)对表达ER驻留荧光蛋白(mKO1)的COS7细胞染色12小时。然后使用共聚焦显微镜观察COS7细胞(LipiDye II:Ex. 473 nm/Em 490-540 nm;mKO1: Ex. 635 nm/Em 660-710 nm)。在ER的网络结构中可以观察到 < 1 μm的微小LDs。(比例尺:20 μm、5 μm和1 μm)

内质网(ER)标记的多色成像.png

 

● LipiDye II在脂肪细胞分化和成熟过程中的长时间染色

使用含LipiDye II(1μM)的培养基诱导3T3-L1前脂肪细胞分化为3T3-L1成熟脂肪细胞。含LipiDye II的分化培养基培养前脂肪细胞2天后,每隔2天用含LipiDye II的维持培养基,在共聚焦激光显微镜下观察8天。结果证明,LipiDye II可以对活细胞进行长时间处理,观察脂滴的成熟过程。整个分化过程中没有出现对细胞的毒性作用,同时也没有影响细胞的分化。

LipiDye II在脂肪细胞分化和成熟过程中的长时间染色.png

 

● 脂肪生成的Z-stack成像

使用含LipiDye II(1μM)的分化培养基培养3T3-L1前脂肪细胞24小时,并进行Z-stack成像。分化约10小时后,通过共聚焦显微镜(Ex. 473 nm/Em 490-540 nm)观察到有微小的LDs生成(650分钟,白色箭头);同时可观察到各脂滴在相互作用,逐渐变大的动态(1050~1450分钟,黄色箭头)。

脂肪生成的Z-stack成像.png 

 

● 脂肪分解的Z-stack成像

将3T3-L1脂肪细胞和LipiDye II(1μM)共同孵育,然后用腺苷酸环化酶激活剂(Forskolin,10 μM)和磷酸二酯酶抑制剂IBMX(100 nM)处理细胞来增加脂肪细胞内cAMP的浓度,从而促进三酰甘油的水解。

添加Forskolin和IBMX后,立即使用共聚焦显微镜(Ex. 473 nm/Em 490-540 nm)进行Z-stack成像(持续800分钟,共3000幅图像)。两小时后,观察到许多微小LDs形成(比例尺:5 μm)。

脂肪分解的Z-stack成像.png 

 

● STED 超分辨率显微成像微小脂滴

用LipiDye II(1μM)对HeLa细胞进行染色。通过激光共聚焦显微镜(Ex. 473 nm/Em 490-540 nm)和STED超高分辨率显微镜(Ex.473 nm/ Em 500-640 nm、STED 660 nm)观察微小脂滴。STED 成像可检测到半峰全宽(FWHM)约120 nm的微小脂滴,而共聚焦显微镜无法清晰检测。(关于STED显微镜的观察条件及分析方法,请见参考文献)

STED 超分辨率显微成像微小脂滴 

 

● 利用荧光酶标仪对细胞脂滴进行半定量分析

首先将三种细胞株(人肾癌细胞786-O、小鼠脑神经瘤细胞Neuro-2a和中国仓鼠卵巢细胞CHO)分别以1 x 104个细胞/孔的数量接种到96孔板中,并在含有10% FBS的DMEM中培养24小时,再用10~200 μM 油酸处理细胞24小时,以促进脂滴的生长。然后用含有2% FBS/DMEM 的5 μM LipiDye II染色2小时。PBS冲洗细胞两次,用荧光酶标仪测量荧光强度(Ex 420 ±5 nm/Em 503 ±10 nm)。结果显示在这三种细胞中观察到脂滴对油酸具有剂量依赖性。

利用荧光酶标仪对细胞脂滴进行半定量分析

 

➧ 参考文献

1. Taki et al.,ACS. Mater. Lett.., 3, 42-49 (2021), Fused Thiophene-S,S,-dioxide-Based Super-Photostable Fluorescent Marker for Lipid Droplets

 


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